本试剂盒采用可以特异性结合DNA的离心吸附柱和独特的缓冲液系统提取细菌（革兰氏阳性菌和阴性菌）的基因组DNA。溶菌酶能有效去除细菌细胞壁；蛋白酶K能把核酸解离出来； RNaseA能去除痕量的RNA污染；离心吸附柱能够高效、专一吸附DNA，最大限度去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物，提取的基因组DNA片段大，纯度高，质量稳定可靠。 使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。

储存条件：在室温（25℃左右）干燥条件下保存

试剂盒组成：

提取得率：

 准备工作：

1. 准备55℃和70℃水浴；无水乙醇；1.5ml灭菌离心管。

2. 按照标签所示在去蛋白液GD和漂洗液PW中加入无水乙醇，混匀后盖紧瓶盖后室温贮存备用。

3. 每次使用前请检查缓冲液GA，缓冲液GB和去蛋白液GD是否有沉淀生成，如果出现沉淀，37℃温浴至沉淀溶解后再使用。

操作步骤：

1、取细菌培养液 1ml，12000rpm 离心 1min.，尽量吸除上清。

2、向菌体中加入 200ul 溶液 A，振荡或用移液器吹打使菌体充分悬浮向悬浮液中加入 20ul 的RNase A (10mg/ml)，充分颠倒混匀，室温放置 15-30min。

注意：如果是革兰氏阳性菌：可在第 2 步操作前用 200ul 终浓度为 20mg/ml 的溶菌酶 ，37 ℃处理 30 min 以上。（溶菌酶的缓冲液用：20 mM Tris, pH 8.0；2 mM Na2-EDTA；1.2% TritonX-100）

3、向管中加入 20ul 的蛋白酶 K(10mg/ml)，充分混匀，55℃消化 30-60min，消化期间可颠倒离心管混匀数次，直至样品消化完全为止，此时可见菌液呈清亮粘稠状。

4、向管中加入 200ul 溶液 B，充分颠倒混匀，如出现白色沉淀，可于 75℃放置 15-30min，沉淀即会消失，不影响后续实验。如果溶液未变清亮，说明样品消化不彻底，可能会导致 DNA的提取量以及纯度降低，还可能堵塞吸附柱。

5、向管中加入 200ul 无水乙醇，充分混匀，此时还可能会出现絮状沉淀，不影响 DNA 的提取，可将溶液和絮状沉淀都加入到吸附柱中，静置 2min。

6、12000rpm 离心 2min. 弃废液，将吸附柱放入收集管中。

7、向吸附柱中加入 600ul 漂洗液(使用前请先检查是否己加入无水乙醇)。12000rpm 离心 1min，弃废液，将吸附柱放入收集管中。

8、向吸附柱中加入 600ul 漂洗液， 12000rpm 离心 l min， 弃废液，将吸附柱放入收集管中。

9、12000rpm 离心 2min，将吸附柱敞口置于室温或 50℃温箱放置数分钟，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，否则漂洗液中的乙醇会影响后续实验如酶切、PCR 等。

10、将吸附柱放入一个干净的离心管中，向吸附膜中央悬空滴加 50-200ul 经 65℃水浴预热的洗脱液，室温放置 5min，12000rpm 离心 1min。

11、离心所得洗脱液再加入吸附柱中，室温放置 2min ，12000rpm 离心 2 min，即可得到高质量的细菌基因组 DNA。

注意事项:

1、样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量下降。

2、若试剂盒中的溶液出现沉淀，可在 65℃水浴中重新溶解后再使用，不影响提取效果。

3、如果实验中的离心步骤出现柱子堵塞的情况，可适当延长离心时间。

4、洗脱缓冲液的体积最好不少于 50ul，体积过小会影响回收效率；洗脱液的 pH 值对洗脱效率也有影响，若需要用水做洗脱液应保证其 pH 值在 8.0 左右(可用 NaOH 将水的 pH 值调至此范围)， pH 值低于 7. 0 会降低洗脱效率。DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。

5、 DNA 浓度及纯度检测：得到的基因组 DNA 片段的大小与样品保存时间、操作过程中的剪切力等因素有关。 回收得到的 DNA 片段可用琼脂糖凝胶电泳和紫外分光光度计检测浓度与纯度。DNA 应在 OD260处有显著吸收峰，OD260值为 1.0 相当于大约 50μg/ml 双链 DNA、40μg/ml单链 DNA。OD260/0D280比值应为 1.7-1.9，如果洗脱时不使用洗脱缓冲液，而使用去离子水，比值会偏低，因为 pH 值和离子存在会影响光吸收值，但并不表示纯度低。

6.所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。